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控制硫化温度合成 α-NiS 纳米球膜,用于非酶葡萄糖传感器的长期保存

摘要

在这项研究中,通过在氧化铟锡 (ITO) 玻璃基板上电镀镍纳米片薄膜和硫化镍涂层 ITO 玻璃基板,成功合成了 α-硫化镍 (α-NiS) 纳米球薄膜。首先,我们在切割成 0.5 × 1 cm 2 的 ITO 玻璃基板上电沉积镍纳米片薄膜。 尺寸。其次,将纳米片镍膜在真空密封玻璃安瓿中在不同退火温度(300、400 和 500°C)下在真空密封玻璃安瓿中退火 4 小时。通过使用 X 射线衍射 (XRD)、可变真空扫描电子显微镜 (VVSEM)、场发射扫描电子显微镜/能谱仪 (FE-SEM/EDS)、循环伏安图 (CV)、电化学阻抗谱 (EIS)、紫外/可见光/近红外 (UV/可见光/NIR) 光谱和光致发光 (PL) 光谱。在 400°C 退火温度 4 小时下,在 α-NiS 薄膜表面观察到许多纳米球。我们还使用高分辨率透射电子显微镜 (HR-TEM) 分析了 α-NiS 纳米球。我们证明了我们的 α-NiS 纳米球膜对不同的葡萄糖浓度具有线性电流响应。此外,我们的α-NiS纳米球薄膜在室温下保存了五年半,仍然可用于检测低浓度葡萄糖。

背景

在过去十年中,硫化镍 (NiS) 已被公认为具有良好的导电性。它可以熔化作为锂可充电电池的正极材料 [1,2,3]。此外,NiS 已应用于太阳能存储 [4, 5]。它还被证明具有优异的性能,可用于光催化剂 [6, 7]。 NiS 薄膜也可用于非酶促葡萄糖传感器 [8, 9]。关于葡萄糖检测,已经开发了许多用于检测葡萄糖的传感方法。最广泛使用和具有历史意义的方法包括铜碘量法、高效液相色谱 (HPLC)、葡萄糖氧化酶 (GC)、毛细管区带电泳 (CZE) 和非酶促葡萄糖传感器 [10]。非酶葡萄糖传感器将成为未来葡萄糖检测的重要应用[11]。我们有兴趣合成 NiS 薄膜并研究这种材料,作为非酶葡萄糖传感器的重要应用之一。在传感器保存研究中,非酶促葡萄糖传感器比酶促葡萄糖传感器保存时间更长[12]。在本文中,我们将描述 α-NiS 薄膜的合成过程,并展示我们的样品,这些样品可用于通过循环伏安 (CV) 测量和电流法检测葡萄糖。我们还发现,没有关于在室温下保存非酶葡萄糖传感器五年半的报道。在本文中,我们证明了我们的 α-NiS 纳米球膜在我们实验室的室温下保存了五年半,并且仍然可用于检测不同溶液(0.1 M NaOH 和 Krebs 缓冲液)中不同浓度的葡萄糖。

方法

α-NiS 薄膜的制备

对于 α-NiS 膜的制备,合成条件是一个两步过程:第一步是制备镍纳米片膜 [13, 14],第二步是通过以下方式合成 α-NiS 膜的过程:一种用于硫化镍纳米片薄膜的物理蒸汽传输 (PVT) 方法 [15, 16]。第一步,通过简单的电沉积方法合成镍纳米片膜。我们使用经过阴极电沉积工艺处理的 Pt 平面阳极和氧化铟锡 (ITO) 玻璃阴极来制造镍纳米片膜。将镍膜电沉积在涂有 ITO 的导电玻璃基板上,将其切割成 0.5 × 1 cm 2 尺寸。每个电阻为 <15 Ω/cm 2 . 0.1 M 硫酸镍六水合物(NiSO4.6H2O,Sigma-Aldrich,≥ 98.5%)和 0.05 M 氢氧化钠(NaOH,SHOWA,96%)用于在双蒸水中制备前体溶液。我们在恒电位模式下使用沉积镍膜。我们使用 pH 7.7 的溶液将电沉积电位设置为 3.0 V DC。高质量的镍膜在 40°C 下电沉积 10 分钟。获得镍膜后,将镍纳米片膜在带有硫片的真空密封玻璃安瓿中退火。 α-NiS 薄膜在不同的退火温度(300、400 和 500°C)下退火 4 小时。我们想确定退火时间的最佳持续时间,我们在 400 °C 的退火温度下对 α-NiS 薄膜进行了不同时间(3 小时和 6 小时)的退火。

α-NiS 薄膜的特征

α-NiS 薄膜的形貌通过利用 Cu Kα 辐射的 XRD (SHIMADZU XRD-6000)、可变真空扫描电子显微镜 (VVSEM) (HITACHI S-3000N) 和 FE-SEM/EDS (HITACHI S-4800) 进行表征在 3.0 kV。 α-NiS 薄膜的电化学性能通过恒电位仪 (Jiehan, ECW-5000) 在三电极配置中使用 CV 测量和电流分析法与 Ag/AgCl 参比电极进行测量。 α-NiS 薄膜通过 CV 测量和电流分析法在 15 毫升 0.1 M NaOH 和不同浓度葡萄糖的溶液中进行评估。 α-NiS 薄膜的阻抗测量是通过在含有 1.5 mM Fe(CN)6 3-/4- 的 0.1 M KCl 中使用电化学阻抗谱 (EIS) (Zennium IM6) 来估计的 .在 Krebs 缓冲液(115 mM NaCl、2 mM KCl、25 mM NaHCO3、1 mM MgCl2、2 mM CaCl2、0.25% 牛血清白蛋白 [pH 7.4];用 5% 平衡二氧化碳)[17]。 α-NiS 薄膜的吸收光谱是用紫外/可见光/近红外分光光度计 (HITACHI U-3501) 在使用超声波分散器将 α-NiS 薄膜分散在蒸馏水中后测量的。光致发光 (PL) 光谱通过荧光光谱仪 (RF-5301PC) 在室温下使用氙激光器获得。最后,利用HR-TEM(JEOL TEM-2010 HR-TEM)系统研究了α-NiS纳米球的晶体结构。

结果与讨论

我们通过电沉积方法获得了镍纳米片薄膜。我们将直流电沉积设置为 3.0 V DC 和 4.0 V DC 的电位。我们将电镀溶液在 40°C 下保持 10 分钟,并观察 ITO 玻璃基板上的电沉积镍膜。图 1 显示了电沉积镍膜的结果。如图 1a、b 所示,在 3.0 V DC 的沉积电位下,观察到的镍纳米片膜表面的平均晶粒尺寸为 0.01-0.3 μm。厚度约为 500 nm 的镍纳米片膜的横截面显示在图 1b 的插图中。观察到,在 4.0 V DC 的沉积电位下,镍膜表面的平均晶粒尺寸为 0.5-1.0 μm。图 1d 显示了镍膜的 XRD 图案。通过与粉末衍射标准联合委员会 (JCPDS870712) 卡进行比较,确认了对应于不同镍膜的 XRD 图案的衍射峰。因此,当在ITO玻璃基板上观察薄膜时,我们确认最终产品是镍薄膜。

镍膜的 FE-SEM 图像。 , b 镍纳米片膜的顶视图是在 3.0 V DC 下电沉积的。插图:镍纳米片薄膜的横截面。 c 镍膜的顶视图是在 4.0 V DC 下电沉积的。 d 在不同电位(3.0和4.0 V DC)下电沉积镍膜的XRD图

我们认为镍纳米片薄膜比镍薄膜更好地发展 α-NiS 薄膜的纳米结构。我们在实验中硫化镍纳米片薄膜以获得纳米 NiS 薄膜。镍膜在真空密封的玻璃安瓿中退火后,我们得到了 α-NiS 膜。图 2 显示了控制不同硫化温度合成 α-NiS 薄膜的结果。图 2a XRD 图案显示在三种不同的退火温度(300、400 和 500°C)下合成了三种 α-NiS 薄膜。在每个样品的 XRD 图中,我们观察到来自不同 α-NiS 薄膜的衍射峰处于同一相位。通过与粉末衍射标准委员会联合 (JCPDS750613) 卡进行比较,确认了对应于 α-NiS 薄膜的 XRD 图案的衍射峰。因此,我们确认最终产品是 α-NiS 薄膜。图 2b-d 显示了在三种不同的退火温度(300、400 和 500°C)下 4 小时的 α-NiS 薄膜的不同形态。 α-NiS 薄膜的 EDS 结果与硫 (S) 和镍 (Ni) 元素的重量百分比 (wt%) 显示在图 2b-d 的插图中。图 2b 显示了在 300°C 退火温度下 α-NiS 薄膜表面上的不规则形状颗粒。我们在图 2b 中观察到颗粒大约为 0.5-2 μm。 α-NiS 薄膜在退火温度 300°C、34.99 wt% S 和 65.01 wt% Ni 且摩尔比为 0.99 (S/Ni) 时的 EDS 结果显示在图 2b 的插图中。在图 2c 中,我们在 400°C 的退火温度下在 α-NiS 薄膜表面观察到球形颗粒和 α-NiS 的多孔结构,平均尺寸约为 0.1-0.2 μm。 α-NiS 薄膜在 400°C 退火温度、35.75 wt% S 和 64.25 wt% Ni 且摩尔比为 1.02 (S/Ni) 时的 EDS 结果显示在图 2c 的插图中。我们还在图 2d 中在 500°C 的硫化温度下在 α-NiS 膜的表面观察到平均尺寸约为 1-5 μm 的链状 α-NiS 颗粒。 α-NiS 薄膜在 500°C 退火温度、36.22 wt% S 和 63.22 wt% Ni 且摩尔比为 1.04 (S/Ni) 时的 EDS 结果显示在图 2c 的插图中。我们观察到样品表面的形态(不规则形状的颗粒、纳米球和链状颗粒)在不同的退火温度(300、400 和 500°C)下发生了变化。一般来说,我们在不同的退火温度下观察到不同的生长演变和纳米结构的形成。研究人员(Denholme 等人)还提出,温度影响 NiS2 薄膜的生长动力学,通过 Ni-S 系统中的温度参数控制不同的形态 [15]。这是由于 S 蒸气压。同样,在 S 蒸气和 Ni 传输反应中,S 蒸气通过 Ni 金属表面的气-固或气-液-固机制参与反应是合理的。因此,反应在封闭系统内进行并且依赖于反应物的蒸气压。蒸气压取决于反应温度和反应物的化学计量比。我们认为随着温度的升高,NiS 的 S 蒸气压变化显着增加,Ni 和 S 反应速率不同。

XRD 图显示了不同退火温度(300、400 和 500°C)下的 α-NiS 纳米球膜。在b退火的α-NiS薄膜的顶视图图像 300,c 400 和 d 500 °C 4 小时。插图:EDS 光谱在 b 的插图中 –d . e 图像显示 α-NiS 薄膜在不同退火时间(3 和 6 H)。 f 曲线显示了我们实验室保存条件下的温湿度测量记录

我们还想确认退火时间的最佳持续时间。 α-NiS 薄膜在 400°C 下退火其他时间(3 和 6 小时)。结果如图 2e 所示。我们观察到不同 α-NiS 薄膜的 XRD 图案处于相同的相,并由图 2e 的插图(左上角)中的 JCPDS750613 卡确认。我们在图 2e 的插图(右上)中观察到,在 400°C 硫化温度下 3 小时,α-NiS 膜表面上的颗粒大约为 0.5-1 μm。 α-NiS 膜在退火温度 400°C、30.43 wt.% S 和 69.57 wt.% Ni 下以 0.8 (S/Ni) 摩尔比处理 3 小时的 EDS 结果显示在插图中(右下)图 2e。我们在图 2e 的插图(左下角)中观察到,在 400°C 硫化温度下 6 小时,α-NiS 膜表面上的颗粒大约为 0.5-2 μm。 α-NiS 薄膜在退火温度 400°C、39.92 wt.% S 和 60.08 wt.% Ni 6 小时且摩尔比为 1.21 (S/Ni) 时的 EDS 结果显示在插图中(右下)图 2e。如图 2c 的插图(EDS 结果)所示,它表明 4 小时样品没有过量或缺乏 S,接近化学计量比 1(S/Ni)。最后,图 2c 的 SEM 图像在退火时间 4 小时内在 α-NiS 膜的表面上具有更多纳米球,与具有较大颗粒(顶部图 2e 的右侧和左下角)。我们确认退火时间的最佳持续时间为 4 小时。

合成α-NiS纳米球薄膜后,我们将部分α-NiS纳米球薄膜放置在我们实验室的带塑料盖的小塑料容器中,并在空气条件下放置了五年半。我们的 α-NiS 纳米球薄膜的保存测试时间为 2011 年 8 月 1 日至 2016 年 12 月 31 日。如图 2f 所示,曲线显示温度(16-26°C)和相对湿度(50-65% ) 2011 年 8 月 1 日至 2016 年 12 月 31 日在我们实验室进行的防腐测试。在完成防腐测试后,我们想通过 CV 测量和电流分析来确认在不同葡萄糖浓度下仍然具有电流响应的 α-NiS 纳米球膜在 2017 年 1 月的解决方案中。我们调查了一些关于测量非酶葡萄糖传感器的 NiS 样品电化学行为的论文。许多研究人员通过 CV 测量和电流法在 0.1 M NaOH 溶液中测量样品,因为他们很容易将结果与相同条件进行比较 [8,9,10,11,12]。图 3 显示了 α-NiS 薄膜的 CV 和电流特性。工作电极面积为0.2 × 0.5 cm 2 用于在所有实验中检测 α-NiS 纳米球膜表面的葡萄糖。 α-NiS 薄膜的氧化还原(氧化还原)反应是通过使用 CV 方法通过带有恒电位仪的 Ag/AgCl 参比电极来估计的。通过恒电位仪在 0 到 0.8 V 之间扫描 1 个周期的 α-NiS 薄膜的 CV 特性。在三电极配置中以 20 mVs -1 的扫描速率测量样品 .关于NaOH的浓度,我们选择0.1 M作为溶液,因为我们看到下面的公式(1)越多OH 我们拥有的阴离子越多 e 溶液中的阴离子[8]。

$$ \mathrm{NiS}+{\mathrm{OH}}^{-}\leftrightarrow \mathrm{NiS}\mathrm{OH}+{\mathrm{e}}^{-} $$ (1) <图><图片>

图像中的三个 CV:红色曲线显示裸 ITO 的 CV;橙色和绿色曲线是不同退火温度(300 和 500°C)下 α-NiS 薄膜的 CV。插图:裸 ITO/玻璃的 CV。 b 具有不同葡萄糖浓度的 0.1 M NaOH 中纳米 NiS/ITO 的 CV:(α) 0 μM、(β) 2 μM、(γ) 7 μM、(δ) 10 μM、(ε) 15 μM、(ζ) 20 μM、(η) 30 μM 和 (θ) 35 μM。插图:左上角——氧化峰电流与葡萄糖浓度的关系图;底部——Ni膜和Ni纳米片膜的CV。 c α-NiS 纳米球膜在 0.1 M NaOH 和不同浓度的葡萄糖中通过电流分析法评估:(α) 1 μM,(β) 2 μM,(γ) 7 μM,(δ) 10 μM,(ε) 15 μM, (ζ) 20 μM、(η) 22 μM、(θ) 25 μM、(ι) 30 μM 和 (κ) 35 μM。插图:左上角——当前响应对葡萄糖浓度的图;底部 - NiS/ITO 在 0.1 M NaOH 和 2 μM 葡萄糖中以及在 2 μM 多巴胺、尿酸和乳酸存在下在 0.6 V DC 的施加电位下的计时电流响应。 d 镍纳米片膜、α-NiS 纳米球膜和 α-NiS 膜在不同退火温度(300 和 500°C)下在含有 1.5 mM Fe(CN)6 3-/4- 的 0.1 M KCl 中的 Nyquist 图 . e 具有不同葡萄糖浓度的 Krebs 中纳米 NiS/ITO 的 CV:(α) 0 μM 和 (β) 20 μM。插图:左上角 - 裸 ITO/玻璃的 CV。 f α-NiS 纳米球膜在具有不同葡萄糖浓度的 Krebs 缓冲液中通过电流分析法进行评估:(α) 0 μM、(β) 10 μM、(γ) 20 μM、(δ) 30 μM 和 (ε) 40 μM。插图:顶部—当前响应对葡萄糖浓度的图

根据上述公式(1),我们认为越多 e 我们在溶液中含有阴离子,恒电位仪中显示出较大的电流值。图 3a 中有 3 条曲线。裸 ITO 的红色 CV 曲线显示在图 3a 的插图中。橙色和绿色 CV 曲线是 α-NiS 薄膜在不同退火温度(300 和 500°C)下的氧化还原反应。我们观察到 CV 曲线在图 3a 中没有负还原电位。我们还发现两个 α-NiS 薄膜对不同的葡萄糖浓度没有任何电流响应。如图 3b 所示,它表明 α-NiS 纳米球膜是通过在具有不同葡萄糖浓度(2、7、10、15、20、30 和 35 μM)的 0.1 M NaOH 溶液中的 CV 测量来评估的扫描速率为 20 mVs −1 .显然,我们在图 3b 中看到了 α-NiS 纳米球膜的氧化还原电位。在另一篇论文中发现了类似的纳米 NiS 膜的氧化还原曲线 [8]。研究人员 (Padmanathan et al. 2015) 报告说,反应机制的解释是两个氧化还原方程。 (2)和(3)关于纳米NiS薄膜的葡萄糖传感。两个方程如下所示[8]:

$$ {\mathrm{Ni}}^{\mathrm{II}}\to {\mathrm{Ni}}^{\mathrm{II}\mathrm{I}}+{\mathrm{e}}^{- } $$ (2) $$ {\mathrm{Ni}}^{\mathrm{II}\mathrm{I}}+\mathrm{glucose}\to {\mathrm{Ni}}^{\mathrm{II} }+\mathrm{葡萄糖酸内酯} $$ (3)

如图 3b 所示,氧化峰的不同电流值在 0.6 V 处明显变化。我们观察到,在图 3b 的插图(左)中,虚线与氧化峰对不同葡萄糖浓度的不同电流响应具有线性关系。镍纳米片膜和镍膜的 CV 曲线也显示在图 3b 的插图(底部)中。在图 3b 的插图(底部)中,从 0 到 0.8 V,镍纳米片薄膜的 CV 曲线的电流响应大于 Ni 薄膜。我们认为我们在α-NiS纳米球薄膜的合成过程中使用镍纳米片薄膜作为前驱体,我们有更多机会在CV曲线中获得更大的电流响应。图 3c 显示 α-NiS 纳米球膜的不同电流响应用于通过电流分析法检测不同浓度(1、2、7、10、15、20、22、25、30 和 35 μM)的葡萄糖。我们观察到葡萄糖浓度从 1 到 35 μM 的不同电流响应,在图 3c 的插图(左)中具有线性关系,相关系数为 0.99。它是由以下描述的:

$$ I\left[{\mathrm{mAcm}}^{-2}\left]=0.0084\right[\mathrm{glucose}\right]\upmu \mathrm{M}+0.2821 $$ (4)

灵敏度值估计为 8.4 μA μM -1 cm −2 对于方程。 (4). α-NiS 纳米球膜在 0.1 M NaOH 和 2 μM 葡萄糖和 2 μM 多巴胺、2 μM 尿酸和 2 μM 乳酸中在 0.6 V DC 的施加电位下的计时电流响应显示在图的插图(底部)中. 3c。我们证明了我们的 α-NiS 纳米球膜是一种在 0.1 M NaOH 中的非酶葡萄糖传感器,对多巴胺、尿酸和乳酸具有抗干扰能力。

关于 α-NiS 纳米球膜的电化学结果,我们认为只有 400°C 的样品在图 2c 中的 α-NiS 纳米球膜表面上显示出许多小纳米粒子和多孔结构。较小的纳米颗粒和多孔结构沉积在α-NiS纳米球膜的表面,因此纳米球膜在电化学检测中提供了更大的表面积和更高的响应。我们观察到样品在 400°C 下退火 4 小时,电流响应在低葡萄糖浓度下。由于α-NiS纳米球膜表面有许多小纳米颗粒和多孔结构,因此只有400°C的样品具有良好的葡萄糖响应。

图 3d 显示 α-NiS 薄膜的电化学阻抗谱 (EIS) 在 0.1 M KCl(含有 1.5 mM Fe(CN)6 3-/4- )。我们观察到 Warburg (W ) α-NiS 纳米球膜的阻抗大于其他两种 α-NiS 膜。 α-NiS纳米球薄膜EIS模型元素为R s =133Ω,R ct =42.1Ω,C d =22.1 μF,并且 W =11.7 kΩ。 Ni纳米片膜的电化学阻抗也显示在图3d中,在这些图案中它具有较低的阻抗值。我们还计算了我们的非酶葡萄糖传感器的稳定性、稳定性标准偏差 (SD) 和可重复使用性的值(见表 1)。从表 1 中稳定性的 SD 值,我们观察到 14 次测量的平均稳定性值 (0.011 mA/min) 大于 13 次测量的平均稳定性值 (0.006 mA/min)。我们认为可重用性的数值约为 13(SD ≤ 0.002 mA/min)。

<图>

在完成对 NiS 样品在 0.1 M NaOH 中的电化学行为的测量后,我们还调查了许多关于生理条件的论文。这些研究人员使用不同的溶液,如磷酸盐缓冲盐水 (PBS)、膜联蛋白 V 结合缓冲液、aECF 溶液和 Krebs 缓冲液用于细胞培养 [17,18,19,20,21]。一些研究人员选择 Krebs 缓冲液作为低葡萄糖浓度的细胞培养缓冲液 [20, 21]。我们的 α-NiS 纳米球膜在 0.1 M NaOH 中用于检测低葡萄糖奉献的线性范围为 1 到 35 μM,因此使用我们的传感器检测生理条件下克雷布斯缓冲液中的低葡萄糖奉献对我们具有实际意义. α-NiS 纳米球膜用于检测 Krebs 缓冲液中不同浓度的葡萄糖。我们使用我们的 α-NiS 纳米球膜通过循环伏安图 (CV) 在 Krebs 缓冲液(115 mM NaCl、2 mM KCl、25 mM NaHCO3、1 mM MgCl2、2 mM CaCl2)中检测不同葡萄糖浓度(0 和 20 μM) , 0.25% 牛血清白蛋白 [pH 7.4];用 5% CO2 平衡,用 0.01 M NaOH 调节至 pH 7.4)[20]。如图 3e 的插图所示,它显示了裸 ITO 的背景 CV 曲线。图 3e 还显示了 NiS/ITO 电极在含有 0 和 20 μM 葡萄糖的 Krebs 缓冲液中的 CV 曲线。我们观察到在 0.6 V 附近具有不同电流响应的 CV 曲线明显。如图 3f 所示,通过在 Krebs 缓冲液(用 0.01 M NaOH 调节至 pH 7.4)中的电流分析法评估 α-NiS 纳米球膜以检测不同的葡萄糖浓度:(α)0 μM,(β)10 μM,(γ ) 20 μM、(δ) 30 μM 和 (ε) 40 μM。插图显示氧化峰电流与葡萄糖浓度的关系图。电流响应曲线显示在图 3f 的插图(顶部)中,其显示了相关系数为 0.99 的线性关系。它由 I[μAcm −2 描述 ] =0.0004[葡萄糖]μM + 0.0638。

图 4 显示了紫外/可见光/近红外吸收光谱和荧光光谱。我们记录了 α-NiS 薄膜在 300-800 nm 光谱范围内(图 4a-c)对于不同退火温度(300、400 和 500°C)的紫外/可见光/近红外吸收。确定能隙 (E g) 纳米球的吸收系数 (α )对光子能量方程使用[22]:

$$ \alpha hv=A{\left( hv-{E}_{\mathrm{g}}\right)}^m $$ (5)

其中 E g 是能隙,A 是具有不同转换值的常数, 是光子能量,m 是一个指数,假定值 1/2、3/2、2 和 3,这些值与电子跃迁的性质相互关联。它负责吸光度。它表明 (αhν ) 2 反对 在图 4a-c 的插图中绘制。当 m =1/2,α-NiS 薄膜的这些吸收光谱允许直接跃迁的适当值。如图 4a-c 的插图所示,我们估计了三个能隙 (E g) α-NiS 薄膜的值(1.08、1.8 和 0.66 eV)。我们使用虚线拟合图 4a-c 插图中 0.6 到 2.8 eV 的曲线。如图 4a-c 的插图所示,我们还观察到最高能隙 (E g) α-NiS 纳米球膜在 400°C 的退火温度下约为 1.8 eV。本研究还使用荧光设备来研究样品的光学特性。以前的研究人员专注于受不同相、形状、结构和表面/体积比影响的 α-NiS 颗粒的荧光光谱 [23]。如图 4d 所示,我们观察了在不同退火温度(300、400 和 500°C)下具有紫外线发射的 α-NiS 薄膜的荧光光谱。样品的 PL 光谱在 448 nm 处显示出尖锐的发射峰,在 369 nm 处出现发射峰(在 λ 处激发) ex =277 nm) [23, 24]。根据我们的 α-NiS 薄膜光学性能的结果,我们认为不同的退火温度有机会在 NiS 薄膜上获得不同的晶粒尺寸。关于表现出量子限制的纳米颗粒,增加纳米颗粒的尺寸会影响带隙随温度从 400 到 500°C 的降低 [25]。 NiS 的光学性质随晶粒尺寸的不同而变化,因此 NiS 的光学性质随温度的不同而显着变化 [25]。 NiS薄膜的光学性能随温度的不同而显着变化,这应该是由于表现出尺寸效应,减小了对带隙的影响。

紫外/可见光/近红外吸收光谱和 (αhν ) 2 对比 a合成α-NiS薄膜的插图插图 300,b 400 和 c 500°C。 d α-NiS薄膜在不同退火温度(300、400和500℃,4小时)下的荧光光谱

我们考虑将 HR-TEM 分析集中在 α-NiS 纳米球膜上,因为我们在 400°C 的退火温度下获得了许多用于非酶葡萄糖传感器的 α-NiS 纳米球。如图 5 所示,我们观察到 α-NiS 纳米球在 400°C 下退火 4 小时。通过 HR-TEM 获得所制备的 α-NiS 纳米球的微观结构信息。图 5a、b 显示了纳米球的 HR-TEM 图像。纳米球的直径为 150 至 250 nm。图 5c HR-TEM 图像还显示了清晰的晶格条纹,其间距为 0.7786 nm,对应于 α-NiS 纳米球的两个相邻 (101) 平面之间的距离。图5d显示了纳米球的SAED图案,衍射环的斑点指向α-NiS纳米结构的(101)。

c α-NiS 纳米球的 HR-TEM 图像。 d α-NiS 纳米球的 SAED 图案在 400°C 下退火 4 小时

结论

总之,通过使用 XRD、VVSEM、FE-SEM、EDS、EIS、UV、PL 和 HR-TEM 设备研究了 α-NiS 纳米球膜。我们观察到 α-NiS 纳米球膜是通过在真空密封的玻璃安瓿中控制 400°C 的退火温度 4 小时形成的。能隙 (E g) α-NiS 纳米球膜的电压约为 1.8 eV。在我们的实验室中将我们的 α-NiS 纳米球膜保存了五年半后,我们观察到 α-NiS 纳米球膜在不同的葡萄糖浓度下仍然具有电流响应,通过 CV 测量和不同溶液(0.1 M NaOH 和 Krebs缓冲)。在 0.1 M NaOH 中检测葡萄糖的线性范围为 1 到 35 μM。对于生理条件,在 Krebs 缓冲液中检测葡萄糖的线性范围约为 0 至 40 μM。

缩写

简历:

循环伏安图

EDS:

能量色散光谱仪

FE-SEM:

场发射扫描电镜

HR-TEM:

高分辨透射电子显微镜

NiS:

硫化镍

PL:

光致发光

PVT:

物理蒸汽输送

标准差:

标准差

UV/可见光/NIR:

紫外/可见光/近红外

VVSEM:

可变真空扫描电镜

wt%:

重量百分比

XRD:

X射线衍射


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