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金纳米颗粒调控人肝细胞癌细胞中 CYP3A4 活性与细胞毒性:粒径、表面化学与蛋白质冠层的影响

摘要

本研究探讨 40 nm 和 80 nm 金纳米颗粒 (AuNP) 经阳离子支化聚乙烯亚胺 (BPEI)、阴离子硫辛酸 (LA) 或中性聚乙二醇 (PEG) 官能化后,在有人血浆蛋白冠层 (PC) 与无蛋白冠层条件下,与人肝细胞癌 (HCC) 细胞系 C3A 的相互作用。除 80 nm LA-AuNP 外,裸 AuNP 均对 C3A 细胞有细胞毒性,但蛋白冠层显著减轻毒性。40 nm BPEI-AuNP 随时间细胞摄取增加,而蛋白冠层降低 80 nm PEG-AuNP 摄取。BPEI-AuNP 引发双相氧化/亚硝酸应激响应,PEG-AuNP 表现为强抗氧化剂。所有裸 AuNP 无论粒径表面电荷均抑制 CYP3A4 活性,蛋白冠层可恢复活性,除 PEG-AuNP 外。40 nm PEG-AuNP 主要诱导线粒体脂肪酸 β-氧化相关基因表达变化,次要影响肝脏外排/摄取转运体。研究深化了对 AuNP-细胞相互作用及其在 HCC 中分子机制的理解,为改进治疗策略提供洞见。

研究背景

肝细胞癌 (HCC) 仍是全球最高发癌症之一,且是美国癌症死亡率增长最快的原因。根治方案——肝移植或手术切除——仅限早期,晚期依赖化疗或放疗,但选择性低、系统毒性大。基因沉默疗法,特别是 RNA 干扰 (RNAi),承诺更高特异性,但高效递送需安全穿透靶细胞的载体。病毒载体转导效率高,但非病毒平台如纳米颗粒 (NP) 因安全性好和理化性质可调而更受青睐。金纳米颗粒 (AuNP) 因易于表面修饰和光学特性,成为靶向递送治疗货物的热门选择。然而进入血液后,AuNP 会吸附蛋白质形成蛋白冠层 (PC),改变表面化学进而影响生物学命运,包括细胞摄取和毒性。理解 NP 粒径、表面电荷和 PC 如何在 HCC 细胞中调节细胞响应,对设计安全有效的纳米药物至关重要。

实验方法

金纳米颗粒合成

40 nm 和 80 nm AuNP 由 nanoComposix (San Diego, CA) 定制制备。BPEI、LA、PEG 官能化分别通过 EDC 化学、二氢硫辛酸偶联、巯基-甲氧基 PEG 化实现。粒径、多分散指数 (PDI)、Zeta 电经动态光散射 (DLS)、透射电镜 (TEM)、UV-Vis 光谱确认。AuNP 经切向流过滤 (TFF) 纯化并无菌过滤。

蛋白冠层制备

人血浆 (n=5,Biological Specialty Corp., Colmar, PA) 与 AuNP 按 55% (v/v) 混合,37 °C、250 rpm 孵育 1 h。重复 PBS 洗涤 (20,000×g, 20 min) 去除弱结合蛋白。所得 PC 包被 AuNP 重悬 PBS 后稀释入细胞培养基。

AuNP 理化表征

在 DI 水、PBS、完全 EMEM (10% FBS) 中于 25 °C 和 37 °C (0 h 和 24 h) 测量裸与 PC 包被 AuNP 的水动力直径 (DH)、PDI、Zeta 电位。室温记录光吸收光谱。

透射电镜

TEM (Tecnai G2 Spirit BioTWIN, 120 kV) 评估 AuNP 形貌。样品滴加于 200 目铜网自然干燥。

细胞培养与活力测定

C3A 细胞 (ATCC CRL-10741) 培养于 EMEM + 10% FBS,96 孔板种 8×10⁴ 细胞/孔,贴壁 48 h 后给药。暴露 AuNP 浓度 0–250 µg/cm² 24 h 后用 alamarBlue® 法测活力。

ICP-MS 测定细胞摄取

细胞用 1.56 µg/cm² AuNP 处理 0.5–24 h。经蚀刻步骤除表面吸附颗粒后,王水消化,ICP-MS 定量细胞内 Au,以 AuNP/细胞表示摄取量。

氧化/亚硝酸应激测定

用总 ROS/SO 试剂盒 (Enzo Life Sciences) 在暴露 40 nm BPEI- 和 PEG-AuNP (高达 125 µg/cm²) 后 1、3、24 h 量化 ROS/RNS 产生。

细胞色素 P450 3A4 活性

用 P450-Glo™ 测定套件 (Promega) 在暴露各 AuNP 类型 LC50 浓度 24 h 后评估 CYP3A4 活性。发光值归一化至对照组。

基因表达谱分析

鉴于 40 nm PEG-AuNP 效应显著,用其 LC50 (129.5 µg/cm²) 处理 C3A 细胞 24 h。总 RNA (RIN ≥ 7.8) 分离、逆转录,用 Human Molecular Toxicology Pathway Finder 和 Human Drug Transporters RT² Profiler™ PCR 阵列 (Qiagen) 分析。差异表达基因 (|fold change| > 2, p < 0.05) 经 qRT-PCR 验证 9 个代表基因。

统计分析

LC50 用 GraphPad Prism 变斜率 Hill 方程拟合。单因素方差分析 (SAS 9.4) 后接 Tukey HSD 检验,p < 0.05 为显著。

结果与讨论

裸与 PC 包被 AuNP 理化表征

图 1 显示 TEM 确认单分散 AuNP,粒径与标称 40、80 nm 吻合。PC 形成导致水动力直径适度增加、UV-Vis 等离子体峰红移,表明蛋白吸附。完全 EMEM 中 24 h DH 和 PDI 稳定,除 PC-BPEI-AuNP 显示 PDI 瞬时下降,提示胶体稳定性增强。PC 包被后 Zeta 电位向中性漂移,反映蛋白掩蔽表面电荷。

金纳米颗粒调控人肝细胞癌细胞中 CYP3A4 活性与细胞毒性:粒径、表面化学与蛋白质冠层的影响
DI 水中裸 AuNP (a) 与 PBS 中 PC-AuNP (b) 在 0 h、25 °C 下的透射电镜图像。UV-Vis 光谱与 DLS 分布见图嵌图。箭头指示 PC 形成。PC: 人血浆蛋白冠层;BPEI: 支化聚乙烯亚胺;LA: 硫辛酸;PEG: 聚乙二醇。

AuNP 细胞毒性

裸 AuNP LC50 范围 127.3–205.5 µg/cm² (图 2a)。所有 40 nm BPEI-、LA-、PEG-AuNP 及 80 nm BPEI-AuNP 均有细胞毒性,而 80 nm LA-AuNP 无显著毒性。PC 显著降低大多数 AuNP 毒性,唯 80 nm BPEI-AuNP 在 250 µg/cm² 下仍保留 51% 活力 (图 2b)。这与前人报道 PC 减弱 AuNP 在原代肝细胞等细胞系中毒性一致 [7–9]。

金纳米颗粒调控人肝细胞癌细胞中 CYP3A4 活性与细胞毒性:粒径、表面化学与蛋白质冠层的影响
C3A 活力与 LC50:a 裸 AuNP;b PC 包被 AuNP。数据为均值±标准差 (n=3)。PC: 人血浆蛋白冠层;ND: 未测定;BPEI: 支化聚乙烯亚胺;LA: 硫辛酸;PEG: 聚乙二醇;LC50: 中位致死浓度。

AuNP 细胞内摄取

时间依赖性摄取分析 (图 3) 显示:40 nm BPEI-AuNP 快速累积,6 h 峰值后下降。相反,PC 减弱 40、80 nm BPEI- 和 LA-AuNP 摄取,却增强 80 nm PEG-AuNP 内化。文献亦报道 PC 可视 NP 粒径、表面化学、细胞类型阻碍或促进内化 [8, 9, 33]。

金纳米颗粒调控人肝细胞癌细胞中 CYP3A4 活性与细胞毒性:粒径、表面化学与蛋白质冠层的影响
无/有 PC 条件下 40 nm (a) BPEI-、(b) LA-、(c) PEG-AuNP 及 80 nm (d) BPEI-、(e) LA-、(f) PEG-AuNP 的时间依赖性细胞摄取。数据为均值±标准差 (n=3)。字母标注显著差异 (Tukey HSD, p<0.05)。PC: 人血浆蛋白冠层。

氧化与亚硝酸应激测量

两种 AuNP 均以时间和浓度依赖方式诱导 ROS/RNS (p<0.0001)。高浓度 40 nm BPEI-AuNP 产生双相响应:1 h 初期抗氧化,3 h 及以后明显促氧化激增。相比之下,40 nm PEG-AuNP 全时间点持续抑制 ROS/RNS 产生 (fold change <0.5),提示保护性抗氧化角色 (图 4)。

金纳米颗粒调控人肝细胞癌细胞中 CYP3A4 活性与细胞毒性:粒径、表面化学与蛋白质冠层的影响
C3A 细胞暴露于 (a) 40 nm BPEI-AuNP 和 (b) 40 nm PEG-AuNP (高达 125 µg/cm²) 24 h 内的时间/浓度依赖性 ROS/RNS 产生。数据为均值±标准差 (n=3)。星号标记显著差异 (Tukey HSD, p<0.05)。

CYP3A4 活性测定

所有裸 AuNP (40、80 nm BPEI、LA、PEG) 在 LC50 浓度下将 CYP3A4 活性抑制至对照 20–31% (图 5)。无毒浓度的 80 nm LA- 和 PEG-AuNP 亦抑制活性 (~30%)。PC 大体恢复所有 AuNP 的 CYP3A4 活性,唯 PEG-AuNP 例外,40 nm 和 80 nm 分别保留 63% 和 46% 活性。结果佐证前人报道 AuNP 通过直接酶相互作用或底物口袋阻断抑制 CYP3A4 [7, 25]。

金纳米颗粒调控人肝细胞癌细胞中 CYP3A4 活性与细胞毒性:粒径、表面化学与蛋白质冠层的影响
C3A 细胞暴露 40、80 nm BPEI-、LA-、PEG-AuNP 24 h (有/无 PC) 后 CYP3A4 活性抑制。数值为均值±标准差 (n=3)。PC: 人血浆蛋白冠层。

40 nm PEG-AuNP 毒性通路聚焦基因表达谱

基因芯片分析在 40 nm PEG-AuNP LC50 下鉴定 212 个差异表达基因 (186 下调、26 上调) (图 6)。值得注意的是 12.3% 基因涉及线粒体脂肪酸 β-氧化,关键酶 (ACAD11、ACAD9、ACADM、ACADS、ACAA1、ACAA2、DECR1、ECHS1、EHHADH、HADHA) 显著下调 (fold change 2–18)。β-氧化酶下调意味着 NADH/FADH2 产生受损,进而损害三羧酸循环和 ATP 合成,这是 AuNP 处理肝细胞线粒体功能障碍的标志 [7–9]。

金纳米颗粒调控人肝细胞癌细胞中 CYP3A4 活性与细胞毒性:粒径、表面化学与蛋白质冠层的影响
40 nm PEG-AuNP LC50 下代表性基因表达变化:a 线粒体脂肪酸 β-氧化,b 凋亡,c 氧化应激/抗氧化响应,d 肝脏摄取/外排转运体。Fold change <−2 或 >2, p<0.05。

凋亡基因 (CASP3、CASP7、CASP9、TNFRSF10A/B、TNFSF10) 上调,抗凋亡基因 (AKT1、BCL2、MCL1、XIAP) 下调,与观察到的剂量依赖性细胞毒性一致。DNA 损伤修复检查点 (CHEK1/2、ERCC1/2/3、LIG4) 混合调控,提示基因组完整性受损。热休克蛋白 (HSPA1A/B) 上调,HSP40/90/60 亚家族下调,反映复杂应激响应。抗氧化基因 (GPX1/2/4、PRDX1/2/6、SOD1、CAT) 上调,促氧化基因 (TXNIP、PPP1R15B) 下调,与 PEG-AuNP 抗氧化表型吻合。

药物摄取与外排转运体基因表达谱

PC 诱导的药物转运体调控进一步凸显潜在药代动力学影响。35 个转运体基因中,12 个 ABC 转运体下调 (如 ABCB1、ABCC2/3/4、ABCG2/8、ABCA1),21 个 SLC 转运体受抑 (如 SLC31A1、SLC22A9)。反之 MDR4 (ABCB4) 和线粒体 ABC 转运体 (ABCB6) 上调,指示对纳米颗粒暴露的代偿响应。这些变化可能影响化疗药物胞内浓度,联合用药时需审慎考量。

金纳米颗粒调控人肝细胞癌细胞中 CYP3A4 活性与细胞毒性:粒径、表面化学与蛋白质冠层的影响
40 nm PEG-AuNP 在 HCC 细胞中调控 CYP3A4 活性、线粒体 β-氧化及药物转运体表达的关键机制示意。绿色条(抑制)和粉色三角(诱导)指示变化方向。

实时 PCR 验证 9 个选定基因确认芯片结果,强化转录组数据可靠性。

结论

本研究表明 AuNP 表面化学和人血浆蛋白冠层的存在关键决定其在 C3A HCC 细胞中的细胞毒性、细胞摄取、氧化应激谱、CYP3A4 抑制及基因表达变化。裸 BPEI- 和 LA-AuNP 高毒性,PEG-AuNP 展现抗氧化性但仍抑制 CYP3A4。PC 大体缓解毒性和 CYP3A4 抑制,除 PEG-AuNP 保留显著效应外。40 nm PEG-AuNP 基因表达分析揭示线粒体脂肪酸 β-氧化酶主导下调、凋亡基因上调、药物转运体广泛调控,为肝毒性机制及药物-纳米颗粒相互作用提供洞见。研究强调设计 AuNP 基治疗药物用于 HCC 时必须考虑蛋白冠层形成和表面官能化。

缩略语

ANOVA
单因素方差分析
AuNP
金纳米颗粒 bare: 无 PC
BPEI
支化聚乙烯亚胺
CYP
细胞色素 P450
DH
水动力直径
DLS
动态光散射
EDTA
乙二胺四乙酸
EMEM
Eagle 基础必需培养基
HCC
人肝细胞癌
HPTC
人肾近端小管细胞
HSD
Tukey 诚实显著差异检验
HUVEC
人脐静脉细胞
ICP-MS
电感耦合等离子体质谱
LA
阴离子硫辛酸
LC50
中位致死浓度
MDR
多药耐药
NP
纳米颗粒
PBS
磷酸盐缓冲液
PC
人血浆蛋白冠层
PDI
多分散指数
PEG
中性聚乙二醇
RNAi
RNA 干扰
RNS
活性氮物种
ROS
活性氧物种
SO
超氧阴离子
TEM
透射电子显微镜
TFF
切向流过滤

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